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品 牌： 日立高新技术公司
型 号： 日立 HT 7700
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样品回收： 不支持样品回收
前置处理： 收费处理
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检测项目：
TEM
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检测条件：
条件具体沟通
检测范围
样品要求
样本初步用2.5%戊二醛固定即可交给我们;
单细胞收集样品：如细菌，肿瘤细胞，生殖细胞，部分真菌，部分藻类等。离心收集后黄豆大小。使用 1.5ml离心管（尖底）。
1.液体培养：轻微并短暂离心培养液后收集细胞，加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min（离心力不可过大，离心时间不可过长，避免机械挤压导致细胞变形。也可根据具体情况调整）离心5min，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min，离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜。建议采用液体培养的方式，利于样品清洗和收集。
2.固体培养：从培养基上刮取细胞群落，加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min离心5min后，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜。
3.贴壁培养：轻轻刮下适量细胞，可选择酶解消化，具体事宜请查询相关文献后操作。加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min离心5min后，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜，低温运输送样。
注意事项：消化离心收集芝麻粒到黄豆大小，PBS清洗后，再离心，戊二醛沿壁缓缓加入固定，不要将细胞打散，数小时后小心将细胞从管壁取下。培养细胞取材第一步要注意不能消化过头，按细胞传代时消化3分钟就会损伤细胞结构，胞膜通透性增大。消化半分钟，需要再加"刮"。
仪器参数
1) 分辨率： 0.144nm (晶格像)@120kV
2) 放大倍率：
(HC Zoom) ×200～×300,000 (31步)
(HR Zoom) ×2,000～×800,000 (26步)
(×2,000～×100,000 HR Zoom； SA)
(低倍模式) ×50～×1,000
3) 相机长度：
(HC Diff) 0.2m ～ 8.0m
(HR Diff) 0.2m ～ 4.0m
4) 束斑尺寸：
(HC Zoom) 0.4～1.5μmφ (5步)
Fine Probe(选配) 20～80nmφ(5步)
(HR Zoom) 0.3～1.0μmφ (5步)
Fine Probe(选配) 20～80nmφ(5步)
5) 样品上的视野：
(HC Zoom) 倍率为×1,000时约110μmφ
(不使用物镜光阑、在荧光屏CCD上)
6) 样品台：
最大倾斜角度 ±30°
(样品台移动 ±0.2mm, 标准样品杆)
7) 其他：
物镜光阑片 : 光阑尺寸 50-100-150-200μφ
选区光阑片 : 光阑尺寸 20-50-100-200μφ
仪器特色&服务特色
测试前先沟通确认条件
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